产品概述：
产品内容：
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规格 组分 |
20 slides |
50 slides |
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YF®488 Tyramide（200×） |
10 µL |
25 µL |
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YF®555 Tyramide（200×） |
10 µL |
25 µL |
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YF®594 Tyramide（200×） |
10 µL |
25 µL |
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YF®640 Tyramide（200×） |
10 µL |
25 µL |
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YF®680 Tyramide（200×） |
10 µL |
25 µL |
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HRP-鼠兔通用IgG |
50 μL |
125 μL |
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BSA |
0.32 g |
0.8 g |
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1× Tyramide Amplification Buffer |
10 mL |
25 mL |
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DAPI染色液（即用型） |
2×1 mL |
5 mL |
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抗荧光淬灭封片剂 |
0.4 mL |
1 mL |
荧光光谱数据：YF®488: 490/513 nm; YF®555: 555/561 nm; YF®594: 585/609 nm; YF®640: 641/658 nm; YF®680: 679/700 nm
储存条件
-20℃避光保存，有效期见外包装。
产品介绍
酪胺信号放大（TSA）是一种基于辣根过氧化物酶（HRP）的催化活性对靶蛋白或核酸进行高密度原位标记的酶学检测方法。原理为酪胺Tyramide的过氧化物酶反应（已标记荧光的酪胺在HRP催化H₂O₂下形成共价键结合位点）产生的大量酶促产物与目标蛋白的酪氨酸残基共价结合，从而使目标蛋白标记上特异的荧光。多重标记仅需在热修复法去除非共价结合的抗体后换另一种一抗、荧光素酪胺，如此往复即可。
注意事项
1. 使用前请将产品瞬时离心至管底，再进行后续实验。
2. 1× Tyramide Amplification Buffer首次使用后，建议小量分装，-20℃保存，避免反复冻融。
3. 为了防止出现假阴性、假阳性的结果，实验过程中需设置阴性对照和阳性对照。对于组织样品，建议对未染色的对照（不添加抗体或酪酰胺）进行成像，确定组织是否有自发荧光，排除对背景的影响。
4. 建议1:200稀释YF® Tyramide。较高的浓度可能会导致信号过强或背景高，建议从1:100到1:1000梯度稀释。
5. 可依次使用多个YF® Tyramide来标记同一样品的不同靶标，每次酪酰胺反应后需进行抗体剥离。
6. 多色标记时，依据抗原密度不同选择不同荧光素（低密度抗原选择强染料；高密度抗原选择较弱染料）。标记顺序对最终标记效果有一定影响，需自行摸索。
7. 如若做细胞样本/冰冻切片的TSA多色实验，需进行预实验判断试剂是否可用，具体步骤请参考相关文献。
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